细胞冷冻步骤:
1、冷冻前一日前更换半量或全量培养基,观察细胞生长情形。
2、配制冷冻保存溶液(使用前配制):将DMSO 加入新鲜培养基中,后浓度为5-10%,混合均匀,置于室温下待用。
3、依细胞继代培养之操作,收集培养之细胞,取少量细胞悬浮液(约0.1 ml) 计数细胞浓度及冻前存活率。
4、离心,去除上清液,加入适量冷冻保存溶液,使细胞浓度为1-5 x 106 cells/ml,混合均匀,分装于已标示完全之冷冻保存管中,1 ml/vial,并取少量细胞悬浮液作污染检测。
细胞保存方法:
1、传统方法:冷存管置于4℃10分钟→ -20℃30分钟→ -80℃16~18小时(或隔夜)→液氮槽长期储存。-20℃不可超过1小时,以防止冰晶过大,造成细胞大量死亡,亦可跳过此步骤直接放入-80℃冰箱中,惟存活率稍微降低一些。
2、程序降温:利用已设定程序的等速降温机以-1~-3℃/分钟之速度由室温降至(-80℃以下)-120℃,再放在液氮槽长期储存。适用于悬浮型细胞与hybridoma之保存。
微生物检验报告如何正确解读?
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